ANTAGONISMO DE ESPECIES DE Trichoderma CONTRA FITOPATÓGENOS QUE CAUSAN PUDRICIÓN RADICAL EN CULTIVOS DE CHILE

Autores/as

  • Edel Torres-Torres Facultad de Ciencias Agrícolas y Forestales. UACH.
  • César Guigón-López Facultad de Ciencias Agrícolas y Forestales. Universidad Autónoma de Chihuahua
  • Luisa Patricia Uranga-Valencia Universidad Autónoma de Chihuahua. Facultad de Ciencias Agrícolas y Forestales.
  • Sergio Guerrero-Morales Universidad Autónoma de Chihuahua. Facultad de Ciencias Agrícolas y Forestales.

DOI:

https://doi.org/10.19136/era.a10nNEIII.3610

Palabras clave:

<i>Capsicum annuum</i>, enfermedades, biological control

Resumen

El cultivo del chile tiene un alto valor de producción en México y es uno de los principales productos hortícolas. La marchitez es la principal enfermedad del cultivo, causada por los fitopatógenos Rhizoctonia solani, Fusarium spp. y
Phytophthora capsici. El manejo de la enfermedad es insatisfactorio a la fecha, por ello, el objetivo de esta investigación fue evaluar la capacidad antagónica in vitro de aislamientos nativos de Trichoderma asperellum, T. yunnanense, T. brevicompactum y T. simmonsii frente a los tres agentes que causan la pudrición radical. En laboratorio se determinó el crecimiento de cada fitopatógeno cuando fueron colocados en confrontación dual, en pruebas de compuestos solubles (CS) por el método de película de celofán y en pruebas de compuestos orgánicos volátiles (COV). El análisis estadístico indicó que en confrontación directa las cuatro
especies inhibieron más a R. solani (52 a 75%) y a P. capsici (64 a 69%); a Fusarium sp, solo de 19 a 47%. Los CS de T. brevicompactum ejercen un mayor control sobre R. solani con valores de 64%. Los CS de T. simmonsii inhibieron 34% a P.capsici. Los COVs que produce T. yunnanense afectan el crecimiento de R. solani más de 60%. Los de T. simmonsii y T. brevicompactum mayormente a P. capsici (34-35%). La participación de los CS y COVs en la inhibición varía dependiendo de la especie de Trichoderma y de la especie fitopatógena. Finalmente, las especies biocontroladoras nativas tienen el potencial para convertirse en una alternativa de solución de las pudriciones radicales.

Descargas

Los datos de descarga aún no están disponibles.

Referencias

Abeysingue S (2009) Effect of combined use of Bacillus subtilis CA32 and Trichoderma harzianum RUOI on biological control of Rhizoctonia solani on Solanum melongena and Capsicum annuum Plant Pathology Journal 8: 9-16.

Albañil-Juárez J A, Mariscal-Amaro LA, Martínez-Martínez TO, Anaya-López JL, Cisneros-López HC, Pérez-Ramírez HA (2015) Estudio regional de fitopatógenos asociados a la secadera del chile en Guanajuato, México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 6: 2191-2197.

Budi M, Giyanto, Tondok E (2023) Trichoderma yunnanense and T. asperellum as potential biological agents for control of basal stem rot disease in oil palm. In IOP Conference Series: Earth and Environmental Science 1133(1): 012036. DOI: 10.1088/1755-1315/1133/1/012036

Cetz-Chi JI, Cristóbal-Alejo J, Tún-Suárez JM, Peraza-Luna FA, Candelero-De la Cruz J (2018) Especies nativas de Trichoderma spp. y su actividad antagónica contra Meloidogyne incognita en Solanum lycopersicum L. Investigación y Ciencia de la Universidad Autónoma de Aguascalientes 26: 5-12.

Companioni-González B, Domínguez-Arizmendi G, García-Velasco R (2019) Trichoderma: Su potencial en el desarrollo sostenible de la agricultura. Biotecnología Vegetal 19: 237-248.

Das MM, Haridas M, Sabu A (2019) Biological control of black pepper and ginger pathogens, Fusarium oxysporum, Rhizoctonia solani and Phytophthora capsici, using Trichoderma spp. Biocatalysis and agricultural biotechnology 17: 177-183.

De la Cruz-Quiroz R, Roussos S, Rodríguez-Herrera R, Hernandez-Castillo D, Aguilar C (2018) Inhibición del Crecimiento de Colletotrichum gloeosporioides y Phytophthora capsici por Cepas Nativas Mexicanas de Trichoderma. Karbala. International Journal of Modern Science 4: 237-243.

Degenkolb T, Gräfenhan T, Nirenberg HI, Gams W, Brückner H (2006) Trichoderma brevicompactum complex: rich source of novel and recurrent plant-protective polypeptide antibiotics (peptaibiotics). Journal of Agricultural and Food Chemistry 54: 7047-7061.

Diyarza-Sandoval NA, Reverchon F (2021) Potenciales agentes de control biológico contra Fusarium spp. en México: situación actual, retos y perspectivas. Biotecnología y Sustentabilidad 6: 16-39.

Duffy B, Schouten A, Raaijmakers J (2003) Pathogen Self-Defense: Mechanisms to Counteract Microbial Antagonism. Annual review of phytopathology 41: 501-538.

Espinoza-Ahumada CA, Gallegos-Morales G, Ochoa-Fuentes YM, Hernández-Castillo FD, Méndez-Aguilar R, Rodríguez-Guerra R (2020) Antagonistas microbianos para biocontrol de la marchitez y su efecto promotor en el rendimiento de chile serrano. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 10: 187-197.

Gallegos-Morales G, Espinoza-Ahumada CA, Méndez-Aguilar R, Rodríguez-Guerra R, Salas-Gómez AL, Peña-Ramos FM (2022) Compatibilidad de especies de Trichoderma en la producción y y biocontrol de marchitez del chile. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios. 9(2): 1-7. DOI: 10.19136/era.a9n2.3066.

Guigón-López C, Guerrero-Prieto V, Vargas-Albores F, Carvajal-Millan E, Ávila-Quezada GD, Bravo-Luna L, Ruocco M, Lanzuise S, Woo S, Lorito M (2010) Identificación Molecular de Cepas Nativas de Trichoderma spp. su Tasa de Crecimiento in vitro y Antagonismo contra Hongos Fitopatogenos. Revista Mexicana de Fitopatología 28: 87-96.

Halifu S, Deng X, Song X, Song R, Liang X (2020) Inhibitory mechanism of Trichoderma virens ZT05 on Rhizoctonia solani. Plants 9: 912. DOI: 10.3390/plants9070912

Hernández-Castillo FD, Castillo-Reyes F, Tucuch-Pérez MA, Arredondo-Valdés R (2020) Biological efficacy of Trichoderma spp. and Bacillus spp. in the management of plant diseases. In: Kumar DS (ed) Organic Agriculture. IntechOpen. London, UK. pp: 97-118.

Hernández-Hernández BN, Tornero-Campante MA, Sandoval-Castro E, Rodríguez-Mendoza M, Taboada-Gaytán OR, Peña-Olvera BV (2021) Crecimiento, rendimiento y calidad de chile poblano cultivado en hidroponía bajo invernadero. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 12: 1043-1056.

Jiang H, Zhang L, Zhang J, Hyde KD, Ojaghian MR (2016) Antagonistic interaction between Trichoderma asperellum and Phytophthora capsici in vitro. Journal of Zhejiang University-Science 17: 271-281.

Keswani C, Mishra S, Sarma B, Bahadur-Singh H, Singh S (2013) Unraveling the efficient applications of secondary metabolites of various Trichoderma spp. Applied Microbiology and Biotechnology 98: 533-544.

Kumar S, Chandra R, Behera L, Keswani C, Sansinenea E (2022) Dual Trichoderma consortium mediated elevation of systemic defense response against early blight in potato. Eur J Plant Pathol 162: 681-696.

Lee S, Yap M, Behringer G, Hung R, Bennett JW (2016) Volatile organic compounds emitted by Trichoderma species mediate plant growth. Fungal Biology and Biotechnology 3: 1-14.

Leylaie S, Zafari D (2018) Antiproliferative and antimicrobial activities of secondary metabolites and phylogenetic study of endophytic Trichoderma species from vinca plants. Frontiers in Microbiology 9: 1484. DOI: 10.3389/fmicb.2018.01484.

Li MF, Li GH, Zhang KQ (2019) Non-Volatile Metabolites from Trichoderma spp. Metabolites 9(3): 58. DOI: 10.3390/metabo9030058.

Marques E, Martins I, Correa-Marques-de-Mello S (2018) Antifungal potential of crude extracts of Trichoderma spp. Biota Neotropica 18(1). DOI: 10.1590/1676-0611-BN-2017-0418

Meng-Fei L, Guo-Hong L, Ke-Qin Z (2019) Non-Volatile metabolites from Trichoderma spp. Metabolites 9(3): 58.DOI: 10.3390/metabo9030058.

Mukherjee PK, Mendoza-Mendoza A, Zeilinger S, Horwitz BA (2022) Mycoparasitism as a mechanism of Trichoderma-mediated suppression of plant diseases. Fungal Biology Reviews 39: 15-33.

Osorio-Hernández E, Hernández-Castillo FD, Gallegos-Morales G, Rodríguez-Herrera R, Castillo-Reyes F (2011) In-vitro behavior of Trichoderma spp. againstPhytophthora capsici Leonian. African Journal of Agricultural Research 6: 4594-4600.

Paredes-Escalante JE, Carrillo-Facio JA, Sañudo-Barajas JA, Allende-Molar R, García-Estrada RS, Gregori R, Labavitch JM (2011) Enzimas líticas producidas por Trichoderma spp. y su correlación con la inhibición in vitro de patógenos causantes de la pudrición de la raíz del Garbanzo. Revista Mexicana de Fitopatología 29: 73-75.

Pedrero-Méndez A, Insuasti HC, Neagu T, Illescas M, Rubio MB, Monte E, Hermosa R (2021) Why is the correct selection of Trichoderma strains important? The case of wheat endophytic strains of T. harzianum and T. simmonsii. Journal of Fungi 7(12): 1087. DOI: 10.3390/jof7121087.

Poveda J (2021) Trichoderma as biocontrol agent against pests: New uses for a mycoparasite. Biological Control 159: 104634. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2021.104634.

Rajani P, Rajasekaran C, Vasanthakumari MM, Olsson SB, Ravikanth G, Shaanker RU (2021) Inhibition of plant pathogenic fungi by endophytic Trichoderma spp. through mycoparasitism and volatile organic compounds. Microbiological Research 242(3): 126595. DOI: 10.1016/j.micres.2020.126595.

Raut I, Calin M, Vasilescu G, Badea-Doni M, Sesan T, Jecu L (2014) Effect Of non volatile compounds of Trichoderma spp. against Fusarium graminearum, Rhizoctonia solani and Pythium ultimum. Scientific Bulletin Series F. Biotechnologies 18: 178-181.

Reino JL, Guerrero RF, Hernández-Galán R, Collado IG (2008) Secondary metabolites from species of the biocontrol agent Trichoderma. Phytochemistry Reviews 7: 89-123.

Redda ET, Ma J, Mei J, Li M, Wu B, Jiang X (2018) Antagonistic potential of different Isolates of Trichoderma against Fusarium oxysporum, Rhizoctonia solani, and Botrytis cinerea. European Journal of Experimental Biology 8(2): 12. DOI: 10.21767/2248-9215.100053.

Reyes-Ramírez A, Cristóbal-Alejo J, Ruiz-Sánchez E, Tun-Suárez JM (2012) Inhibición del crecimiento in vitro de Fusarium sp. aislado de chile habanero (Capsicum chinensis) con hongos antagonistas. Fitosanidad 16: 161-165.

Richter D, Levin T (2019) The origin and evolution of cell-intrinsic antibacterial defenses in eukaryotes. Genetics & development 58: 111-122.

Robles-Hernández L, Salas-Salazar NA, Hernández-Huerta J, González-Franco AC (2019) Principales enfermedades que afectan el potencial productivo del chile (Capsicum annuum L.) en Chihuahua, México. En: Flores-Córdova ML, Luján-Aguirre RS, Porras-Flores DA (eds) Chiles Regionales. variedades, producción e inocuidad. Primera edición. Universidad Autónoma de Chihuahua. Chihuahua, México. pp: 21-29.

Rokni N, Alizadeh HS, Bazgir E, Darvishnia M, Mirzaei-Najafgholi H (2021) The tripartite consortium of Serendipita indica, Trichoderma simmonsii, and bell pepper (Capsicum annum). Biological Control 158: 104608. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2021.104608.

Sadañoski MA, Gutierrez-Brower G, Castrillo ML, López AC, Ojeda P, Zapata PD, Villalba LL, Otegui MB (2018) Capacidades antagónicas de cepas Trichoderma y su multiplicación en masa usando desechos agrícolas. Revista de Ciencia y Tecnología 30: 4-11.

Samuels G, Hebbar P (2015) TRICHODERMA: Identification and agricultural applications. The American Phytopathological Society. Minnesota, U.S.A. 204p.

Shabana Y, Abdel-Fattah G, Ismail AE, Rashad Y (2007) Trichoderma harzianum: A biocontrol agent against Bipolaris oryzae. Mycopathologia 164: 81-89.

Shentu X, Yao J, Yuan X, He L, Sun F, Ochi K, Yu X (2018) Tri11, tri3, and tri4 genes are required for trichodermin biosynthesis of Trichoderma brevicompactum. AMB Express 8(1): 1-11. DOI: 10.1186/s13568-018-0585-4.

Shentu X, Zhan X, Ma Z, Yu X, Zhang C (2014) Antifungal activity of metabolites of the endophytic fungus Trichoderma brevicompactum from garlic. Brazilian Journal of Microbiology 45: 248-254.

SIAP (2021) Creció 2.7 por ciento la producción de chile verde en México en 2020 y registra mayor demanda en los mercados internacionales. Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural. https://www.gob.mx/agricultura/prensa/crecio-2-7-por-ciento-la-produccion-de-chile-verde-en-mexico-en-2020-y-registra-mayor-demandaen- los-mercados-internacionales?idiom=es. Fecha de consulta: 15 de Septiembre de 2021.

Soller-Ramada MH, Cardoso-Lopes FA, Ulhoa CJ (2019) Trichoderma: metabólitos secundários. En: Conrado-Meyer M, Mazaro SM, da-Silva JC (Eds) Trichoderma: Uso na Agricultura. Embrapa. Brasília, DF. pp. 201-2018.

Sood M, Kapoor D, Kumar V, Sheteiwy MS, Ramakrishnan M, Landi M, Araniti F, Sharma A (2020) Trichoderma: The “secrets”of a multitalented biocontrol agent. Plants 9(6): 762. DOI: 10.3390/plants9060762.

Stoppacher N, Kluger B, Zeilinger S, Krska R, Schuhmacher R (2010) Identification and profiling of volatile metabolites of the biocontrol fungus Trichoderma atroviride by HS-SPME-GC-MS. Journal of Microbiological Methods 81: 187-193.

Stummer BE, Zhang X, Yang H, Harvey PR (2022) Co-inoculation of Trichoderma gamsii A5MH and Trichoderma harzianum Tr906 in wheat suppresses in planta abundance of the crown rot pathogen Fusarium pseudograminearum and impacts the rhizosphere soil fungal microbiome. Biological Control 165: 104809. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2021.104809.

Suárez-Contreras LY, Peñaranda-Figueredo FA (2021) Identificación molecular de hongos filamentosos y su potencial biotecnológico. Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial 20: 194-206.

Tapwal A, Pandey H (2016) In vitro evaluation of Trichoderma species for virulence efficacy on Botryodiplodia palmarum Current Life Sciences 2:86-91. DOI: 10.5281/zenodo.61073.

Tian Y, Yu D, Liu N, Tang Y, Yan Z, Wu A (2020) Confrontation assays and mycotoxin treatment reveal antagonistic activities of Trichoderma and the fate of Fusarium mycotoxins in microbial interaction. Environmental Pollution 267: 115559. DOI: 10.1016/j.envpol.2020.115559.

Tomah AA, Abd-Alamer IS, Li B, Jing-Ze Z (2020) A new species of Trichoderma and gliotoxin role: A new observation in enhancing biocontrol potential of T. virens against Phytophthora capsici onchili pepper. Biological Control 145: 104261. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2020.104261.

Tys´kiewicz R, Nowak A, Ozimek E, Jaroszuk-S´ ciseł J (2022) Trichoderma: The current status of Its application in agriculture for the biocontrol of fungal phytopathogens and stimulation of plant growth. International Journal of Molecular Sciences 23(4): 2329. DOI: 10.3390/ijms23042329.

Wang C, Zhuang W (2019) Evaluating effective Trichoderma isolates for biocontrol of Rhizoctonia solani causing root rot of Vigna unguiculata. Journal of Integrative Agriculture 18: 2072-2079.

Woo SL, Ruocco M, Vinale F, Nigro M, Marra R, Lombardi N, Pascale A, Lanzuise S, Manganiello G, Lorito M (2014) Trichoderma-based products and their widespread use in agriculture. The Open Mycology Journal 8 (Suppl-1, M4): 71-126.

Wu K, Chen YW, Xu LH, Zhao LX (2016) Endophytic Trichoderma gamsii YIM PH30019: A promising biocontrol agent with hyperosmolar, mycoparasitism, and antagonistic activities of induced volatile organic compounds on root-rot pathogenic fungi of Panax notoginseng. Journal of Ginseng Research 40: 315-324.

Zin NA, Badaluddin NA (2020) Biological functions of Trichoderma spp. for agriculture applications. Annals of Agricultural Sciences 65: 168-178.

Descargas

Publicado

2024-01-11

Número

Sección

ARTÍCULOS CIENTÍFICOS

Cómo citar

Torres-Torres, E., Guigón-López, C., Uranga-Valencia, L. P., & Guerrero-Morales, S. (2024). ANTAGONISMO DE ESPECIES DE Trichoderma CONTRA FITOPATÓGENOS QUE CAUSAN PUDRICIÓN RADICAL EN CULTIVOS DE CHILE. Ecosistemas Y Recursos Agropecuarios, 10(NEIII). https://doi.org/10.19136/era.a10nNEIII.3610

Artículos similares

221-230 de 321

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.

Artículos más leídos del mismo autor/a