Cariotipo de Incilius valliceps (Anura: Bufonidae) y hallazgo de cromosomas sexuales (ZW/ZZ) revelados en macho fenotípico

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.19136/era.a11n3.4121

Palabras clave:

Anfibio, reversión sexual, disruptores antropogénicos, cromosomas

Resumen

El sapo costero Incilius valliceps , ha sido poco estudiado y comprendido desde diversas perspectivas biológicas y ecológicas. El objetivo del presente estudio, fue describir el cariotipo típico en mitosis de I. valliceps a partir de dos hembras y cinco machos adultos recolectados en dos localidades del estado de Tabasco, México. A todos los especímenes, se les aplicó tratamientos estándar de citogenética. El armado y la interpretación cariotípica se basó en la nomenclatura estándar. El cariotipo típico en mitosis de I. valliceps se compone por 2n= 22 cromosomas. Sin embargo, se observaron dos cariotipos, uno caracterizado por machos homogaméticos (ZZ) con fórmula cromosómica de 12msm+8T+2A (NF= 34) y un macho fenotípico de la localidad La Lima con fórmula cromosómica de hembra genética (ZW) con 12msm+8T+1stt+1A (NF= 36). Los resultados indican, reversión sexual de la hembra genética a macho fenotípico.

Descargas

Los datos de descarga aún no están disponibles.

Biografía del autor/a

  • Javier Hernández-Guzmán, Universidad Juárez Autónoma de Tabasco

    Profesor e investigador en diversas áreas como la herpetología, citogenética, biotecnología y manejo de fauna silvestre en diferentes universidades en el Estado de Tabasco. Miembro de la Sociedad Mexicana de Genética y activo del Sistema Estatal de Investigadores del Consejo de Ciencia y Tecnología del Estado de Tabasco (CCYTET). Autor de diversos artículos científicos y colaborador en libros publicados por la CONABIO.

  • Lenin Arias-Rodriguez, División Académica de Ciencias Biológicas, Universidad Juárez Autónoma de Tabasco (UJAT)

    Biólogo por la UJAT; Maestro en Ciencias por el Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A.C (CIAD); Doctor en Biociencias Marinas por la Universidad de Hokkaido, Japón.  Profesor-investigador de la División Académica de Ciencias Biológicas (DACBiol-UJAT), ha impartido asignaturas diversas a nivel Licenciatura y posgrado (Maestría y Doctorado) con interés en la investigación de aspectos de genética básica,fisiología, comportamiento y reproducción de organismos acuáticos y  terrestres de Tabasco en México.

Referencias

Arias-Rodriguez L, González-Hermoso JP, Fletes-Regalado H, Rodríguez-Ibarra LE, del Valle-Pignataro G (2007a) Cariotipo de los caracoles de tinte Plicopurpura pansa y Plicopurpura columellaris (Gastropoda: Murucidae). Revista de Biología Tropical 55(3/4): 853-866. https://doi.org/10.15517/rbt.v55i3-4.5961.

Arias-Rodriguez L, Ibarra-Castro L, Páramo-Delgadillo S (2008) Los cromosomas mitóticos del pez tropical Petenia splendida (Cichlidae). Revista de Biología Tropical 56(2): 895-907. https://doi.org/10.15517/rbt.v56i2.5632.

Arias-Rodriguez L, Indy JR, Ahumada-Hernández RI, Barragán-Cupido H, Ávalos-Lázaro AA, Páramo-Delgadillo S (2011) Caracterización cariotípica en mitosis y meiosis del robalo blanco Centropomus undecimalis (Pisces: Centropomidae). Revista de Biología Tropical 59(2): 683-692. https://doi.org/10.15517/rbt.v0i0.3132.

Arias-Rodriguez L, Morishima K, Arai K (2007b) Genetically diversified populations in the loach Misgurnus anguillicaudatus inferred from newly developed microsatellite markers. Molecular Ecology Notes 7(1): 82-85. https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2006.01536.x.

Arias-Rodriguez L, Morishima K, Arai K (2009a) Inter-populational difference in microsatellite–centromere map distances in the loach, Misgurnus anguillicaudatus. Ichthyological Research 56: 126-132. https://doi.org/10.1007/s10228-008-0077-7.

Arias-Rodriguez L, Páramo-Delgadillo S, Contreras-Sánchez WM, Álvarez-González CA (2009b) Cariotipo del pejelagarto tropical Atractosteus tropicus (Lepisosteiformes: Lepisosteidae) y variación cromosómica en sus larvas y adultos. Revista de Biología Tropical 57(3): 529-539. https://doi.org/10.15517/rbt.v57i3.5473.

Arias-Rodriguez L, Páramo-Delgadillo S, Durán-González AL (2006) Caracterización citogenética del pez tropical de agua dulce Parachromis managuensis (Pisces: Cichlidae). Revista de Biología Tropical 54(1): 35-42. https://doi.org/10.15517/rbt.v54i1.13986.

Ayling LJ, Griffin DK (2002) The evolution of sex chromosomes. Cytogenetics and Cells Genetics 99(1/4): 125-140. https://doi.org/10.1159/000071584.

Bachmann K (1970) Specific nuclear DNA amounts in toads of the genus Bufo. Chromosoma 29(3): 365-374. https://doi.org/10.1007/BF00325949.

Barragán-Vázquez MR, Ríos-Rodas L, Fucsko LA, Porras LW, Mata-Silva V, Rocha A, DeSantis DL, García-Padilla E, Johnson JD, Wilson LD (2022) The herpetofauna of Tabasco, Mexico: composition, distribution, and conservation status. Amphiban & Reptile Conservation 16(2): 1-61.

Beck ML, Mahan JT (1979) Ammoniacal silver staining of nucleolar organizer regions in four species of Bufo. Copeia 1979(2): 341-345. https://doi.org/10.2307/1443422.

Bender DA, Murray RK (2016) Metabolismo de los xenobióticos. En Rodwell VW, Bender DA, Botham KM, Kennelly PJ, Weil P (eds). Harper. Bioquímica ilustrada 30e. McGraw Hill. Ciudad de México, MX. Pp. 583-588.

Bogart JP (1972) “Karyotypes”. En: Blair WF (ed) Evolution in the genus Bufo. University of Texas Press. Texas, US. pp. 171-195.

Bruschi DP, Sousa DY, Soares A, De Carvalho KA, Busin CS, Ficanha NC, Lima AP, Andrade GV, Recco-Pimentel SM (2019) Comparative cytogenetics of nine populations of the Rhinella genus (Anura, Bufonidae) with a highlight on their conservative karyotype. Genetics and Molecular Biology 42(2): 445-451. http://dx.doi.org/10.1590/1678-4685-GMB-2018-0139.

Canseco-Márquez L, Gutiérrez-Mayén MG (2010) Anfibios y reptiles del Valle de Tehuacán-Cuicatlán. Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad, Fundación para la Reserva de la Biósfera Cuicatlán, Benemérita Universidad Autónoma de Puebla. Ciudad de México, México. 302p.

Chichorro F, Juslén A, Cardoso P (2019) A review of the relation between species traits and extinction risk. Biological Conservation 237: 220-229. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2019.07.001.

Cole CJ, Lowe CH, Wright JW (1968) Karyotypes of eight species of toads (Genus Bufo) in North America. Copeia 1968(1): 96-100. https://doi.org/10.2307/1441555.

Córdova JH, Descailleaux J (1996) Tres cariotipos diferentes y un híbrido en poblaciones naturales de Bufo marinus (Amphibia: Anura) en Perú. Theorema 5(7): 13-28.

De la Cruz-Pons A, Zavala-Cruz J, Guerrero-Peña A, Salgado-García S, Lagunes-Espinoza LC, Gavi-Reyes F (2012) Metales pesados en suelos cultivados con caña de azúcar en la Chontalpa Tabasco. Universidad y Ciencia 28(2): 119-130. https://doi.org/10.19136/era.a28n2.20.

Fiedler S, Siebe C, Herre A, Roth B, Cram S, Stahr K (2009) Contribution of oil industry activities to environmental loads of heavy metals in the Tabasco lowlands, Mexico. Water, Air, and Soil Pollution 197: 35-47. https://doi.org/10.1007/s11270-008-9789-6.

Franco-Navia JF, Iturriaga-Luna EK, Ochoa-Vizarreta R (1999) Los cromosomas del sapo Bufo spinulosus (Amphibia – Anura), del Cusco. Situa 8(15): 55-58.

Frost DR (2024) Species count for country: Mexico. https://amphibiansoftheworld.amnh.org/content/search?subtree=&subtree_id=&country%5B%5D=525&search_type=count. Fecha de consulta: 27 marzo de 2024.

Frost DR, Grant T, Faivovich J, Bain RH, Haas A, Haddad CFB, De Sá RO, Channing A, Wilkinson M, Donnellan S, Raxworthy CJ, Campbell JA, Blotto BL, Moler P, Drewes RC, Nussbaum RA, Lynch JD, Green DM, Wheeler WC (2006a) The amphibian tree of life. Bulletin of the American Museum of Natural History 297: 1-291. https://doi.org/10.1206/0003-0090(2006)297[0001:TATOL]2.0.CO;2.

Frost DR, Grant T, Mendelson III JR (2006b) Ollotis Cope, 1875 is the oldest name for the Genus currently referred to as Cranopsis Cope, 1875 (Anura: Hyloides: Bufonidae). Copeia 2006(3): 558. https://doi.org/10.1643/0045-8511(2006)2006[558:OCITON]2.0.CO;2.

Frost DR, Mendelson JR, Pramuk J (2009) Further notes on the nomenclature of middle American toads (Bufonidae). Copeia 2009(2): 418. https://doi.org/10.1643/CH-08-204.

Gerónimo-Torres JC, Barragán-Vázquez MR, Ríos-Rodas L (2022) Incorporando la distintividad taxonómica en estudios de diversidad: Anfibios del Parque Estatal de la Sierra de Tabasco, México. Ecosistemas 31(2): 2294. https://doi.org/10.7818/ECOS.2294.

González-Hernández AJX, Garza-Castro JM, Balderas-Valdivia CJ (2021) Manual de identificación de la herpetofauna de México. Universidad Nacional Autónoma de México. Ciudad de México, MX. 60p.

Hernández-Guzmán J, Arias-Rodriguez L, Indy JR (2011) Los cromosomas meióticos de la rana arborícola Smilisca baudinii (Anura: Hylidae). Revista de Biología Tropical 59(1): 355-362. https://doi.org/10.15517/rbt.v59i1.3204.

Hernández-Guzmán J, Arias-Trinidad A, Islas-Jesús RE, Fraire-Vázquez A, De la Cruz-Izquierdo RI, García-Guzmán NC, Ruiz X (2015) Cromosomas, lesión del ADN y malformación nuclear en la tortuga dulceacuícola Kinosternon leucostomum (Testudines: Kinosternidae). The Biologist 13(2): 201-211.

Hernández-Guzmán J, Indy JR, Yasui GS, Arias-Rodriguez L (2014) Los cromosomas de las tortugas tropicales: Kinosternon leucostomum, Trachemys scripta y Staurotypys triporcatus (Testudines: Kinosternidae/Emydidae). Revista de Biología Tropical 62(2): 671-688. https://doi.org/10.15517/rbt.v62i2.10843.

IUCN (2020) The IUCN Red Listo f Threatened Species. Incilius valliceps. International Union for Conservation of Nature and Natural Resources https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T87633006A53951218.en. Fecha de consulta: 14 agosto de 2022.

Klank J, Chaves G, Arias E (2020) Range expansion of the gulf coast toad, Incilius valliceps (Wiegmann 1833) (Anura, Bufonidae), from Costa Rica. Check List 16(3): 753-757. https://doi.org/10.15560/16.3.753.

Kloas W (2002) Amphibians as a model for the study of endocrine disruptors. International Review of Cytology 216: 1-57. https://doi.org/10.1016/s0074-7696(02)16002-5.

Koyani PR, Saiyad SS (2011) Study of effect of colchicine exposure on length of chromosome during mitosis. Journal of Anatomical Society of India 60(2): 177-180. https://doi.org/10.1016/S0003-2778(11)80020-1.

Lambert MR, Giller GSJ, Barber LB, Fitzgerald KC, Skelly DK (2015) Suburbanization, estrogen contamination, and sex ratio in wild amphibian populations. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 112(38): 11881-11886. https://doi.org/10.1073/pnas.1501065112.

Lee JC (2000) A field guide to the amphibians and reptiles of the Maya world: The lowlands of Mexico, northern Guatemala and Belize. Cornell University Press. New York, USA. 416p.

Lertzman-Lepofsky GF, Kissel AM, Sinervo B, Palen WJ (2020) Water loss and temperature interact to compound amphibian vulnerability to climate change. Global Change Biology 26(9): 4868-4879. https://doi.org/10.1111/gcb.15231.

Levan A, Fredga K, Sandberg AA (1964) Nomenclature for centromeric position on chromosomes. Hereditas 52(2): 201-220. https://doi.org/10.1111/j.1601-5223.1964.tb01953.x.

McKinney ML (1997) Extinction vulnerability and selectivity: Combining ecological and paleontological views. Annual Review of Ecology, Evolution and Systematics 28: 495-516. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.28.1.495.

Mendelson III JR, Kinsey CT, Murphy JB (2015) A review of the biology and literature of the gulf coast toad (Incilius nebulifer), native to Mexico and the United States. Zootaxa 3974(4): 517-537. https://doi.org/10.11646/zootaxa.3974.4.4.

Mendelson III JR, Mulcahy DG, Williams TS, Sites Jr JW (2011) A phylogeny and evolutionary natural history of mesoamerican toads (Anura: Bufonidae Incilius) based on morphology, life history, and molecular data. Zootaxa 3138(1): 1-34. https://doi.org/10.11646/zootaxa.3138.1.1.

Morais L, Queiroz A, Viegas W (1991) Differential effects of colchicine in genotypes with one or more haploid sets. Cytologia 56(2): 157-164. https://doi.org/10.1508/cytologia.56.157.

Mulcahy DG, Mendelson III JR (2000) Phylogeography and speciation of the morphologically variable, widespread species Bufo valliceps, based on molecular evidence from mtDNA. Molecular Phylogenetics and Evolution 17(2): 173-189. https://doi.org/10.1006/mpev.2000.0827.

Oliver-López L, Woolrich-Piña GA, Lemos-Espinal JA (2009) La familia Bufonidae en México. 1ra Edición. Universidad Nacional Autónoma de México, Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad. Ciudad de México, México. 139p.

Ramos-Herrera S, Broca-Martínez LF, Laines-Canepa JR, Carrera-Velueta JM (2012) Tendencia de la calidad del agua en ríos de Tabasco, México. Ingeniería 16(3): 207-217.

Sanders O, Cross JC (1964) Relationships between certain north american toads as shown by cytological study. Herpetologica 19(4): 248-255.

Schmid M, Nanda I, Steinlein C, Kausch K, Epplen JT, Haaf T (1991) Sex determining mechanisms and sex chromosomes in amphibian. En: Green DM, Sessions SK (eds) Amphibian Cytogenetics and Evolution. Academic Press. New York, US. pp. 393-430.

SEMARNAT (2001a) Norma Oficial Mexicana NOM-126-ECOL-2000, por la que se establecen las especificaciones para la realización de actividades de colecta científica de material biológico de especies de flora y fauna silvestres y otros recursos biológicos en el territorio nacional. Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales. Diario Oficial de la Federación. https://www.profepa.gob.mx/innovaportal/file/3358/1/nom-126-semarnat-(2000).pdf. Fecha de consulta: 14 de julio de 2024.

SEMARNAT (2001b) Norma Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999, especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio. Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales. Diario Oficial de a Federación. https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/203498/NOM-062-ZOO-1999_220801.pdf. Fecha de consulta: 14 de julio de 2024.

SEMARNAT (2019) Modificación del anexo normativo III, lista de especies en riesgo de la Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2010, protección ambiental, especies nativas de México de flora y fauna silvestres, categorías de riesgo y especificaciones para su inclusión, exclusión o cambio, lista de especies en riesgo. Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales. Diario Oficial de la Federación. https://www.dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=5578808&fecha=14/11/2019#gsc.tab=0. Fecha de consulta: 14 de julio de 2024.

Skorinov DV, Bolshakova DS, Donaire D, Pasynkova RA, Litvinchuk SN (2018) Karyotypic analysis of the spined toad, Bufo spinosus Daudin, 1803 (Amphibia: Bufonidae). Russian Journal of Herpetology. 25(4): 253-258. https://doi.org/10.30906/1026-2296-2018-25-4-253-258.

Smith J, Voss S (2009) Amphibian sex determination: segregation and linkage analysis using members of the tiger salamander species complex (Ambystoma mexicanum and A. t. tigrinum). Heredity 102: 542-548. https://doi.org/10.1038/hdy.2009.15.

Smits AP, Skelly DK, Bolden SR (2014) Amphibian intersex in suburban landscapes. Ecosphere 5(1): 1–9. https://doi.org/10.1890/ES13-00353.1.

Villanueva S, Botello AV (1992) Metales pesados en la zona costera del Golfo de México y Caribe mexicano: una revisión. Revista Internacional de Contaminación Ambiental 8(1): 47-61.

Descargas

Publicado

2024-10-28

Número

Sección

ARTÍCULOS CIENTÍFICOS

Cómo citar

Hernández-Guzmán, J., & Arias-Rodriguez, L. (2024). Cariotipo de Incilius valliceps (Anura: Bufonidae) y hallazgo de cromosomas sexuales (ZW/ZZ) revelados en macho fenotípico. Ecosistemas Y Recursos Agropecuarios, 11(3). https://doi.org/10.19136/era.a11n3.4121

Artículos similares

11-20 de 24

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.